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利用CRISPR/Cas9系統構建Lrtm1基因敲除的C2C12細胞系
關鍵詞：lrtm1 基因敲除 c2c12
摘要：目的:利用CRISPR/Cas9技術構建穩定敲除Lrtm1(leucine-rich repeats and transmenbrane domains 1)基因的C2C12細胞系,為研究Lrtm1基因的作用提供實驗基礎。方法:設計3對針對Lrtm1基因的向導RNA(sgRNA),將sgRNA插入載體pCRISPRLvSG06中;利用慢病毒包裝系統包裝含有sgRNA的重組質粒pCRISPR-LvSG06;將病毒感染C2C12細胞,并加入嘌呤霉素篩選,將篩選嘌呤霉素陽性的細胞提取RNA,逆轉錄成c DNA;設計Cas9引物,利用cDNA為模版,PCR驗證C2C12細胞中Cas9的表達,確認慢病毒成功感染C2C12細胞;利用96孔板挑選單克隆細胞的方法篩選得到單克隆細胞;將擴增的單克隆細胞提取基因組DNA,測序Lrtm1基因相關序列并與野生型Lrtm1基因進行對比,確認敲除成功的克隆細胞株;誘導敲除Lrtm1穩定細胞株成肌分化,檢測成肌分化標志因子Myosin的蛋白表達,RT-PCR檢測轉錄因子PAX7的mRNA表達,Western blot檢測H3K27me3蛋白水平。結果:測序結果顯示向導RNA(sgRNA)成功插入載體質粒;將單克隆細胞DNA測序結果顯示A和C克隆成功敲除Lrtm1基因;敲除Lrtm1基因后成肌分化標志因子Myosin蛋白表達降低,成肌轉錄因子PAX7 mRNA的表達降低,在分化72和96 h組,H3K27me3蛋白水平較野生型組增高。結論:利用CRISPR/Cas9技術成功敲除Lrtm1基因,穩定敲除Lrtm1基因的C2C12細胞系構建成功;敲除Lrtm1后能抑制C2C12細胞成肌分化,并且抑制成肌轉錄因子PAX7的m RNA表達,PAX7mRNA表達降低的原因可能為H3K27me3水平增高。
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